D -luciferina, sal de potasio -40902es

YeasenSku: 40902ES01

Tamaño: 100 mg
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La D-luciferina es un sustrato común para la luciferasa y se utiliza ampliamente en biotecnología, especialmente en tecnología de imágenes in vivo. El mecanismo de acción es que la luciferina (sustrato) puede oxidarse para emitir luz en presencia de ATP y luciferasa. Cuando la fluoresceína está en exceso, el número cuántico de luz producida es igual a Las concentraciones de luciferasa se correlacionaron positivamente (ver la figura siguiente). Los plásmidos que portaban el gen codificador de la luciferasa (Luc) se transfectaron en células y se introdujeron en animales de estudio, como ratas y ratones.

La D-luciferina también se usa comúnmente en estudios in vitro, incluidos el análisis de los niveles de luciferasa y ATP; análisis de genes reporteros; secuenciación de alto rendimiento y varias pruebas de contaminación. Hay tres formas de producto: D-luciferina (ácido libre), sal de D-luciferina (sal de sodio y sal de potasio). La principal diferencia radica en la solubilidad: solubilidad en agua de la primera y solubilidad del sistema tampón. Son débilmente solubles excepto en bases débiles como concentraciones bajas de soluciones de NaOH y KOH. Solubles en metanol y DMSO; Este último se puede disolver fácilmente en agua o tampón, fácil de usar.

Características

  • Sin radiación, prácticamente inofensivo para los organismos vivos.
  • Bioluminiscencia, sin fuente de luz de excitación.
  • Es tan sensible que se puede detectar en unos cientos de células.
  • Buena penetración, aún se puede detectar una profundidad de tejido de 3-4 cm.
  • Alta relación señal-ruido, fuerte señal de fluorescencia y buena antiinterferencia.

Aplicaciones

  • En el experimento de tumorigénesis en ratones desnudos, se observó el crecimiento del tumor sin invasión en tiempo real, sin medición de extirpación del tumor.
  • Para probar el efecto de la administración sobre el crecimiento del tumor o la metástasis, el sustrato de fluoresceína puede eliminarse completamente en 3 horas, sin interferir en el experimento farmacológico.
  • Se detectó la localización y distribución de células extrañas en animales.
  • El gen objetivo o el promotor del gen objetivo se fusiona con el gen de la luciferasa para detectar cambios en la expresión genética durante el tratamiento farmacológico o la progresión de la enfermedad.
  • Monitoreo del trasplante de células madre, supervivencia y proliferación; seguimiento de la distribución y migración de células madre in vivo.

Presupuesto

sinónimo en inglés Sal de potasio del ácido (S)-4,5-dihidro-2-(6-hidroxi-2-benzotiazolil)-4-tiazolcarboxílico; D-luciferina luciérnaga, sal de potasio
NÚMERO CAS 115144-35-9
Fórmula C11H7N2O3S2K
Peso molecular 318,42 g/mol
Apariencia Polvo amarillo claro
Solubilidad Soluble en agua (60 (mg/ml)

Componentes

Componentes No. Nombre 40902ES01 40902ES02 40902ES03 40902ES08
40902 D-Luciferina, sal de potasio 100 mg 500 mg 1 gramo 5g


Cifras

Citado de "Un nuevo inhibidor alostérico de la fosfoglicerato mutasa 1 suprime el crecimiento y la metástasis del cáncer de pulmón de células no pequeñas, Cell Metab.2019;30(6):1107-1119

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Documentos:
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Storage

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FAQ

There is no difference. The three are merely variations in naming by different companies, and they are all compounds (S)-2-(6-Hydroxy-2-benzothiazolyl)-2 -thiazoline-4-carboxylic acid
Besides being used for in vivo imaging, fluorescent dye products are also employed in other applications involving luciferase, such as in vitro reporter gene assays, microbial/viral monitoring, pyrosequencing, etc.
Sodium fluorescein: It can be used for cell permeability testing. The permeability of the pigment can be determined by measuring the absorbance value at OD490. D-fluorescein sodium salt: Used for in vivo imaging and reporter gene systems. It is detected through a cold luminescence module and does not require excitation light stimulation.
The main differences among the three are as follows:
1) Solubility: The salt form is easily soluble in water. The solubility of potassium salt is 60mg/ml, and that of sodium salt is 100mg/ml. Free acid is not easily soluble in water. It can be dissolved by a weak alkaline solution of sodium bicarbonate, and its solubility in methanol is 10mg/ml, and in DMSO is 50mg/ml.
2) Toxicity: The salt form is more convenient to use during the process, especially in in vivo imaging experiments, as it can dissolve in water and the reaction toxicity will be smaller (Fluorescein is a low-molecular-weight organic compound composed of phenylthiazole and thiazole carboxyl group, with low toxicity).
3) Usage effect: There is no significant difference. In in vivo experimental studies, the usage rate of potassium salt is higher.
It has an impact. The purity is above 99%, with a good level of 99%. For 99% pure fluorescein, there is 1% solid impurity. If this 1 gram of impurity is dissolved in 25 ml of buffer solution (this dilution ratio is the standard dilution method for in vivo imaging experiments), the concentration of the impurity at this time is 0.4 g/L. Assuming the molecular weight of the impurity is 1000 g/mol, then the molar concentration of the impurity is 400 μM. This concentration may inhibit the action of certain enzymes in the cells and may reduce the experimental effect or cause harm to the animals.
The powder should be stored in a dark place at -20 or -70 degrees Celsius. Its validity period is at least one year.
D-fluorescein (D-Luciferin) is a commonly used substrate for luciferase. Its mechanism of action is that under the action of ATP and luciferase, the fluorescent substance (the substrate) can be oxidized and emit light. When there is an excess of fluorescent substance, the number of photons produced is positively correlated with the concentration of luciferase.
2. Native coelenterazine is an action substrate for various luciferases such as sea kidney luciferase (Rluc) and Gaussia luciferase (Gluc).
Fluorescein is a small molecule with excellent water solubility and lipid solubility. It can easily penetrate the cell membrane and the blood-brain barrier.
Either one is fine. Intraperitoneal injection has a slower diffusion rate and the light emission lasts longer; intravenous injection has a faster diffusion rate, but the light emission lasts for a very short period of time.
Intraperitoneal injection (i.p.), with a fluorescein concentration of 150 mg/kg per kg of body weight. Taking a 20g C57 mouse as an example, the dosage for each mouse for one test: 150 mg/kg × 20g = 3mg, 100mg ÷ 3mg = 33 mice. This is for reference only. The specific dosage should be based on the reagent and without any loss.
Generally speaking, potassium d-fluorescein does not cause any toxic effects on animals.
There is no such information.
Chemiluminescence, no excitation wavelength required. The detection wavelength for firefly luciferin is 560 nm. The detection wavelength for sea kidney luciferin is 465 nm.
It can pass through the blood-brain barrier, the placental barrier and the blood test barrier, and also enter living cells.
The recommended concentrations are derived from the literature:
1) Injection method: It can be done through intraperitoneal injection or tail vein injection.
2) Injection volume: The scientific approach is to evaluate the injection dose based on the kinetic curve. The initial attempted injection dose is: 150mg substrate/kg of mouse body weight. Therefore, the purchase quantity can be calculated according to the above method: If there are 10 mice, 22 - 25g, then 33 - 37.5mg of substrate is required.
Approximately 3 minutes after intraperitoneal injection of fluorescein into mice, cells expressing luciferase began to emit light. The intensity reached a stable peak after 10 minutes, and this peak lasted for about 10 - 15 minutes before gradually diminishing. Detection can be conducted within 10 - 15 minutes after the injection. This is for reference only. It is recommended to conduct a preliminary experiment to establish the kinetics curve of luciferase, thereby determining the optimal time for signal detection and the signal plateau period.
To successfully conduct the in vivo imaging experiment, the following conditions are required: The target tissue or cells must express the luciferase gene; the injection of the luciferin substrate must be successful; and the thickness of the tissue at the luminescent site is also a factor. If the experiment fails, the reasons can be investigated from these aspects: whether the luciferase gene is expressed, whether the luciferin substrate was injected correctly, and whether the luminescent site is deep.

Citations

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