Hieff Unicon ™ colorgps QPCR Master Mix (Low Rox) _ 11189es
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Hieff Unicon ™ colorgps QPCR Master Mix (Low Rox) _ 11189es
Hieff Unicon ™ colorgps QPCR Master Mix (Low Rox) _ 11189es
Hieff UNICON™ ColorGPS qPCR Master Mix (Low Rox) è una pre-soluzione per l'amplificazione PCR quantitativa in tempo reale 2×, caratterizzata da elevata intensità di fluorescenza, elevata sensibilità e specificità e alta resa di amplificazione. Il componente principale, Hieff UNICON™ Taq DNA Polymerase, è avviato a caldo con metodo anticorpale, che può inibire efficacemente l'amplificazione non specifica causata dal primer annealing durante la preparazione del campione. Allo stesso tempo, la formula aggiunge fattori per migliorare l'efficienza di amplificazione della reazione PCR e facilitatori per equalizzare l'amplificazione dei geni con diversi contenuti...

Color-Traceable qPCR: Zero Mispipetting

Frequently Bought Together

Hieff Unicon ™ colorgps QPCR Master Mix (Low Rox) _ 11189es

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YeasenSku: 11189ES03
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Hieff UNICON™ ColorGPS qPCR Master Mix (Low Rox) è una pre-soluzione per l'amplificazione PCR quantitativa in tempo reale 2×, caratterizzata da elevata intensità di fluorescenza, elevata sensibilità e specificità e alta resa di amplificazione. Il componente principale, Hieff UNICON™ Taq DNA Polymerase, è avviato a caldo con metodo anticorpale, che può inibire efficacemente l'amplificazione non specifica causata dal primer annealing durante la preparazione del campione. Allo stesso tempo, la formula aggiunge fattori per migliorare l'efficienza di amplificazione della reazione PCR e facilitatori per equalizzare l'amplificazione dei geni con diversi contenuti di GC (30~70%), in modo che la PCR quantitativa possa ottenere una buona relazione lineare in un'ampia gamma di regioni quantitative. Il prodotto utilizza la reazione di cambio colore misto di diversi coloranti per monitorare l'operazione di pipettaggio, il che riduce efficacemente il verificarsi di errori di pipettaggio.

Caratteristiche

Monitoraggio del pipettaggio: riduzione del rischio di errori di aggiunta/mancati

Amplificazione eccellente: buona linearità su un'ampia gamma lineare

Alta precisione: può distinguere accuratamente i modelli con una differenza di concentrazione doppia

Buona ripetibilità: piccola variabilità tra pozzetti nei pozzetti replicati, con conseguente migliore ripetibilità

Stabile e affidabile: il sistema di reazione può essere conservato a temperatura ambiente per 24 ore e il prodotto rimane inalterato dopo 20 cicli di congelamento-scongelamento

Applicazioni

Analisi della differenza di espressione genica

Analisi quantitativa assoluta

Specifiche

Concentrazione

2 ×(miscela qPCR)

Metodo di rilevamento

Metodo di tintura

Metodo PCR

PCR-q

Polimerasi

Taq DNA polimerasi

Tipo di campione

Il DNA

Attrezzatura per l'applicazione

Applied Biosystems 7500, 7500 Fast, ViiA7; Stratagene MX4000, MX3005P, MX3000P e altri strumenti PCR quantitativi a fluorescenza che richiedono l'aggiunta di basse concentrazioni di colorante di riferimento ROX

Tipo di prodotto

Premiscela per PCR quantitativa a fluorescenza in tempo reale

Applicare a (applicazione)

Espressione genica

Componenti

Componenti n.

Nome

11189ES03

11189ES08

11189ES60

11189-UN

Hieff UNICON™ qPCR GPS a colori Mixaggio principale (Lloio (Rox)

1 ml

5×1 ml

100×1 mL

11189-B

Tampone di diluizione 10×

1 ml

1 ml

20×1 ml

Spedizione e stoccaggio

Questo prodotto deve essere conservato a una temperatura compresa tra -25 e -15 °C per 1 anno.

Cifre

Figura 1. È possibile ottenere risultati affidabili all'interno dell'intervallo dinamico.

Utilizzando 2 µL di template plasmidici con un gradiente di 10^1-10^7, i geni correlati sono stati amplificati. Hieff UNICON™ Il master mix ColorGPS è in grado di rilevare efficacemente un intervallo di quantità di template di 7 ordini di grandezza, ottenendo una buona linearità entro un ampio intervallo lineare.

Figura2Può distinguere con precisione differenze di concentrazione del modello pari a 2 volte.

Utilizzando 2 µL di plasmide diluito in un gradiente 2 volte come stampo, i geni correlati sono stati amplificati. Hieff UNICON™ Il master mix ColorGPS è in grado di risolvere con precisione le differenze di concentrazione del modello.

Figura3Si osserva una piccola variabilità tra pozzetti, che mostra una migliore ripetibilità.

Utilizzando decine di copie di plasmide come stampo, l'amplificazione è stata eseguita con diversi reagenti quantitativi fluorescenti secondo le procedure specificate nei rispettivi manuali di istruzioni. I valori SD indicano che, rispetto ad altri reagenti di trascrizione inversa, il nuovo prodotto presenta differenze minori tra i pozzetti replicati e una migliore ripetibilità.

Figura4. Più flessibile, adatto a procedure standard o rapide.

Nella procedura standard, il tempo di denaturazione e il tempo di estensione sono impostati rispettivamente a 10 secondi e 30 secondi, mentre nella procedura rapida, il tempo di denaturazione e il tempo di estensione sono impostati rispettivamente a 3 secondi e 10 secondi, per rilevare i valori Ct corrispondenti a 10 geni target. I risultati mostrano che i valori Ct ottenuti con il nuovo prodotto sia nelle procedure standard che rapide hanno una forte correlazione e il nuovo prodotto può ottenere buoni risultati utilizzando la procedura rapida.

Figura5Dopo che il sistema di reazione è stato preparato, può rimanere stabile a temperatura ambiente per 24 ore.

Utilizzando diversi geni di topo, cellule umane 293 e Arabidopsis thaliana come target, dopo aver preparato il sistema di reazione, è stato posto al buio a diverse temperature per 24 ore prima del rilevamento. Rispetto all'elaborazione immediata, la differenza di rilevamento per diversi geni non supera 0,5 Ct, il che indica che è possibile ottenere risultati stabili anche con operazioni di lunga durata.

Documenti:

Manuali

11189_Manuale_Ver.IT20241218.pdf

Storage

This product should be stored at -25~-15℃ for 18 months.

FAQ

Please refer to the "YiSheng Biotechnology YiSheng Biotechnology Dye Method Fluorescence Quantitative PCR Mix Selection Table" for details. Click here to learn more and help you choose the appropriate reagents.
For molecular enzyme reagents, simply invert and mix them together, then perform a gentle centrifugation. It is not recommended to vigorously shake to mix them.
Refer to the manual. Ultimately, it is necessary to ensure that after being mixed with the template, the volume is exactly 1×. For example, for 20 μL of cDNA stock solution, add 180 μL of sterile ultrapure water to dilute it 10 times, resulting in 200 μL of diluted template. Take 90 μL of the diluted template and add 10 μL of 10× Dilution Buffer, mix well, and then use it. You can choose not to do this, but it will not affect the result.
You can choose to use the cDNA stock solution or dilute it. Just make sure that the Ct value of the gene you want falls within the range of 15 to 30. Generally, for every 10-fold dilution of cDNA, the Ct value increases by 3.3.
Store in a dark place and the reaction system must not be left open. These two points are essential. It can be placed in a 4℃ refrigerator or at room temperature for 24 hours. Before using, gently shake and centrifuge the sample before loading it onto the instrument. Before loading, carefully check if the tubes or plates have been contaminated.
https://cdn.shopify.com/s/files/1/0803/9419/1166/files/bbbb_1024x1024.png?v=1769394213 When designing primers, it is best to cross introns. The design method can refer to "Enjoyable! A single article to understand qPCR primer design, a must-have skill for experimental experts!" Also, validated primers can be selected. The selection method can refer to "Where to find ready-made qPCR primer sequences?"
The possible reasons are as follows:
1. The instrument has not been calibrated for a long time or it is aging. Usually, the instrument needs to be calibrated once a year. It is necessary to have an instrument engineer perform the calibration or replace the aging components.
2. A 10 μL reaction system was used. The normal system is a 20 μL system. Using half of the normal system would result in an excessively low total concentration of Rox, increasing the probability of BadRox occurrence. It is recommended to conduct the experiment using the 20 μL system.
The specificity of qPCR products can usually be determined through the melting curve. If it is still necessary to determine the products through gel electrophoresis, the qPCR product can undergo electrophoresis. Electrophoresis requires Loading Buffer, and the product cannot be directly loaded for electrophoresis.
1. Confirm whether the signal acquisition function is enabled in the program. If a two-step method is used, the signal acquisition should be set during the annealing extension stage.
2.Is the length of the product too long? If the length of the product is set to 500bp or more, this situation may occur. It is recommended that during primer design, the length of the product be controlled within the range of 80-300bp.
3. Are the primers inappropriate? If the primers are not designed correctly, they need to be redesigned. If the primers are correctly designed but seem to be degraded, PAGE electrophoresis can be used to check the integrity of the primers.
4. Template degradation: Prepare the template anew and repeat the experiment.
The analysis is conducted by observing the melting curve. The melting curve shows that the melting peak shape of NTC does not overlap with that of the corresponding gene, and the TM value of NTC is smaller than that of the corresponding gene. In this case, the product corresponding to NTC is a primer dimer. If the melting curve peak shape of the corresponding gene is a single peak, the collection of the signal of the related gene will not be affected. The melting curve shows that the melting peak shape of NTC overlaps with that of the corresponding gene. In this case, the product corresponding to NTC is likely to be the product of the corresponding gene. The system has been contaminated. We need to check one by one whether the water, primers, or reagents have been contaminated. If none of them have been contaminated, it might be aerosol contamination. Based on the obtained amplification data, the ΔCT value is calculated to determine whether the contamination has a significant impact on the system. If ΔCT ≥ 5, it indicates that the contamination has a minor effect and can be ignored.
It indicates the presence of genomic DNA contamination. It is recommended to use an RNA extraction kit that removes the genome for RNA extraction or during reverse transcription by adding a step to remove the genome. Alternatively, when designing the primers, a design across introns should be adopted.
1. If the CT value is less than 30, but the repeatability is very poor, what should we do? Improve the accuracy of sample addition. Avoid adding small volumes and reduce the error of addition. This can be achieved by preparing a large sample system, for example, mixing primers, water, and qPCR mix into a large system or using the method of mixing primers and water into a large system. The large system needs to be mixed evenly. Improve the accuracy of the pipette's aspiration. Pipettes usually need to be calibrated regularly, once a year.
2. What if CT is ≥ 30 but the repeatability is very poor? At this point, due to the low abundance of the effective template, the randomness of collisions between the template and the primers increases, thereby causing a greater difference between the replicons. It is recommended to try adding 2-3 replicons, and then eliminate the data with large differences for data analysis.
The overlapping peaks in the melting curve are located to the left of the main peak. This might be a situation caused by primer dimerization. One possible solution could be to increase the annealing temperature, reduce the primer concentration, or redesign the primers. The overlapping peaks in the melting curve are located to the right of the main peak. a. It is possible that the non-specific amplification occurred due to poor specificity of the primers. The primers need to be redesigned. b. It is possible that the template DNA was contaminated with genomic DNA. It is recommended to use an RNA extraction kit that removes the genomic DNA for RNA extraction, or to add a step of removing the genomic DNA during reverse transcription to reprepare the cDNA template.

Citations

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