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Hieff NGS®Library Quantification Kit qPCR Master Mix 12302ES
物品单位 价格 品牌
1526 Yeasen
  • 产地:China
  • 货号:12302ES05
  • 发布日期: 2020-03-26
  • 更新日期: 2020-03-26
产品详细说明
产地 China
品牌 Yeasen
货号 12302ES05
用途范围 文库定量
纯度 %
CAS编号
规格 500 T
是否进口

产品信息


产品名称

产品编号

规格

价格(元)

Hieff NGS? Library Quantification Kit for Illumina?, qPCR Master Mix

12302ES05

500 T

1526.00

产品描述

本产品是用于lllumina?平台高通量测序文库浓度*定量的专用试剂盒,提供定量所需的qPCR Master Mix、定量扩增引物和参比染料ROX。扩增引物根据NGS文库接头序列P5和P7设计,可保证特异性扩增双端接头完整的文库分子;qPCR Master Mix是基于抗体法热启动的染料法qPCR预混液。本产品搭配DNA标准品(Cat#12307:包含经梯度稀释的六份450 bp的双链DNA片段溶液,浓度为20 pM-0.0002 pM)可对不同长度、不同GC或AT含量样本中高效、特异扩增,实现精确定量。

本试剂盒已经过严格的质量和功能检测,试剂盒所有组分均达到DNA污染控制的严格质控要求,应用于NGS文库定量精确灵敏,且批间稳定,结果重现性优异。

产品组分

组分名称

规格

12302ES05

12307ES09

Hieff NGS? SYBR qPCR Master Mix (2×)

5×1 mL

--

qPCR Primer Mix

600 μL

--

Rox (25 μM)

200 μL

--

Rox (250 μM)

200 μL

--

DNA Standards 1-6

6×96 μL

--


注意:

1. 根据仪器类型选择合适的参比染料ROX。

类别

机型

不添加ROX

Bio-Rad CFX96?, CFX384?, iCycler iQ?, iQ?5, MyiQ?, MiniOpticon?, Opticon?, Opticon 2, Chromo4?; Cepheid SmartCycler?; Eppendorf Mastercycler?ep realplex, realplex 2 s; Illumina Eco qPCR; Qiagen/Corbett Rotor-Gene?Q, Rotor-Gene?3000, Rotor-Gene?6000; Roche Applied Science LightCycler?480; Thermo Scientific PikoReal Cycler.

添加Rox (250 μM)

Applied Biosystems 5700, 7000, 7300, 7700, 7900, 7900HT, 7900HT Fast; StepOne?, StepOnePlus?.

添加Rox (25 μM)

Applied Biosystems 7500, 7500 Fast, ViiA?7; Stratagene MX4000?, MX3005P?, MX3000P?


2. qPCR Primer Mix 中包含一对引物,序列如下,可预先通过引物序列确认文库是否可以被该引物对扩增。

Primer 1:5'-AAT GAT ACG GCG ACC ACC GA-3'

Primer 2:5'-CAA GCA GAA GAC GGC ATA CGA-3'


运输与保存方法

冰袋运输。所有组分应-20℃保存,qPCR Master Mix与ROX避光保存,有效期6个月;如短期内反复使用,qPCR Master Mix可解冻后于4℃避光暂存,有效期3个月。


注意事项

一、关于操作

1. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

2. 请于使用前确保产品冻融和彻底混匀,短暂离心收集至管底后置于冰上备用。

3. 为保证产品品质,避免反复冻融超过30次!

4. 为避免样品交叉和气溶胶污染,推荐使用带滤芯的枪头,吸取不同样品时请更换枪头。

5. 试剂吸取时应保证枪头适当深入液体,排出时应确认枪头无残留。


二、关于文库稀释

文库需稀释至标准曲线有效Ct范围内进行定量,稀释比例可参照过往经验或使用其他测定方式测定的浓度作为参考(如NanoDrop?,Qubit?或Bioanalyzer)。使用本试剂盒可定量的文库浓度范围参见下表。

由于DNA在非缓冲环境中易降解,因此应使用缓冲稀释液(10 mM Tris-HCl,pH 8.0 [25℃] + 0.05% Tween 20)稀释文库,切勿使用水作为稀释液。测定时,文库应现测定现稀释,置于冰上待测,切勿使用以往配制储存的稀释后文库。

表1  DNA Standard浓度

DNA Standard

摩尔浓度

质量浓度

拷贝数浓度

Std 1

20 pM

5.5 pg/μL

12×106 copies/μL

Std 2

2 pM

0.55 pg/μL

12×105 copies/μL

Std 3

0.2 pM

0.055 pg/μL

12×104 copies/μL

Std 4

0.02 pM

0.0055 pg/μL

12×103 copies/μL

Std 5

0.002 pM

0.00055 pg/μL

12×102 copies/μL

Std 6

0.0002 pM

0.000055 pg/μL

12×101 copies/μL


三、污染与阴性对照(Contamination and No-template Controls)

1. 进行qPCR实验时,应保证良好的实验操作规范,以防对工作区域、试剂、耗材、仪器、DNA标准品等造成污染。推荐将反应体系配制区和模板制备区进行物理隔离,并定时使用0.5%次氯酸钠或10%漂白剂对各实验区域进行擦拭清理。

2. 反应体系配制过程中DNA Standards的加入应按照从低浓度至高浓度(DNA Standard 6至1)的顺序进行,每次移液都应更换新的枪头,以避免气溶胶污染。

3. 每次实验都应平行进行NTC阴性对照反应,配合融解曲线进行扩增特异性和体系污染程度分析。因扩增引物序列为Illumina?平台固定序列而非qPCR专用引物序列,且扩增循环数较多,NTC阴性对照反应出现引物二聚体扩增进而产生Ct属正常情况。正常情况下Ct (NTC) > Ct (DNA Standard 6) + 3。


四. 扩增曲线基线设置

因DNA Standard 1的摩尔浓度远远高于常规qPCR模板,其Ct往往非常小。而大部分qPCR仪器都默认将3-15循环设置为基线(Baseline),有时会将DNA Standard 1的Ct值误认为是测定时的噪声背景,继而影响标准曲线制作。手动设置基线(Baseline)为1-3循环可以有效避免这种情况发生。


五、文库长度矫正

为避免片段长度对文库*定量的影响,需要在定量结果计算时,对文库长度进行矫正。根据文库荧光染料SYBR? Green I结合DNA后产生的荧光强度与DNA分子量成正比的原则,根据以下公式进行文库浓度长度矫正。

矫正后的稀释文库浓度(pM)= [450 bp /文库平均长度(bp)] × 稀释文库的浓度(pM)


六、熔解曲线分析

熔解曲线在配合NTC阴性对照进行污染程度分析以及确认标准曲线*有效Ct时至关重要,推荐每次实验都进行熔解曲线采集步骤。本产品DNA Standards产生的熔解曲线呈现特征单峰。

image.png 

图1  文库标准品熔解曲线

使用方法

一、解冻试剂

将Hieff NGS? qPCR Mix,Primer Mix,DNA Standards 1-6,文库稀释液(10 mM Tris-HCl, pH 8.0 + 0.05% Tween 20),ROX Dye(如需要)从冰箱中拿出,冰浴解冻。各试剂解冻后,涡旋混匀,短暂离心后置于冰上备用。


二、稀释文库

使用文库稀释液(10 mM Tris-HCl,pH 8.0 [25℃] + 0.05% Tween 20)对待测文库进行适当稀释。推荐稀释度为1:1000-1:100000。对于高浓度文库,可额外设置3个2倍稀释梯度,如按1:1000稀释文库,可额外设置1:2000,1:4000,1:8000稀释比例,以保证测定值在试剂盒所提供的标曲范围内。


三、反应体系配制

于反应管中配制如下体系,上下颠倒或涡旋振荡混匀,并短暂离心将反应液收集至管底。

表2  qPCR反应体系

名称

体积

Hieff NGS? SYBR qPCR Master Mix(2×)

10 μL

qPCR Primer Mix

1 μL

Diluted DNA Library/DNA Standard 1-6/ddH2O*

2 μL

ddH2O

7 μL

Total

20 μL


注:1)每个反应至少设置3个平行;2)推荐进行20 μL反应体系,如需进行10 μL反应,则将体系各组分等比减少;3)*在阴性对照反应管中加入ddH2O;在样品反应管中加入稀释后的文库;在标准曲线反应管中加入DNA Standards;4)根据仪器选择合适的ROX,推荐使用量为0.5 μL。


四、qPCR运行程序

将反应管置于qPCR仪中,按下述条件设置qPCR反应程序,并运行(熔解曲线可根据仪器默认即可)。

表3  qPCR程序

步骤

温度

时间

循环数

预变性

95℃

5 min

1 cycle

循环反应

95℃

10 sec

40 cycles

60℃

45 sec*

熔解曲线

95℃

15 sec

1 cycle

60℃

60 sec

95℃

15 sec


注:*当文库平均长度>700 bp时,建议延伸时间延长至90 sec。


五、数据分析

1. 标准曲线制作

1)根据复孔间Ct差异≤0.2的原则,对DNA Standards原始Ct进行过滤,并计算平均Ct。

2)使用有效范围内的Ct(作为纵坐标)和Log[pM](作为横坐标)绘制标准曲线。参照NTC阴性对照Ct确认标准曲线Ct有效范围。

如Ct (NTC) > Ct (DNA Standard 6) + 3,则*有效Ct为Ct (DNA Standard 6),应使用DNA Standard 1-6所产生的Ct绘制标准曲线;

如Ct (DNA Standard 6) + 3 > Ct (NTC) > Ct (DNA Standard 5) + 3,则*有效Ct为Ct (DNA Standard 5),应使用DNA Standard 1-5所产生的Ct绘制标准曲线;

如Ct (DNA Standard 5) + 3 > Ct (NTC) > Ct (DNA Standard 4) + 3,则*有效Ct为Ct (DNA Standard 4),应使用DNA Standard 1-4所产生的Ct绘制标准曲线;

基于定量准确性考虑,请至少使用4个Ct (DNA Standards)绘制标准曲线。如Ct (DNA Standard 4) + 3 > Ct (NTC),提示定量体系存在严重污染,需更换体系中所有组分后重复试验。

3)绘制的标准曲线相关系数R2应不低于0.99,斜率应位于-3.1至-3.6之间(表示扩增效率位于90%-110%之间)。如标准曲线参数不佳,应重复试验。


2. 文库浓度计算

稀释文库的Ct只有位于标准曲线有效Ct范围之内才可用于浓度计算,同时应对文库进行长度矫正。可根据下述公式计算原始文库浓度(nM):

原始文库浓度(nM)= [450 bp /文库平均长度(bp)] × 稀释文库的浓度(pM)× 稀释倍数/1000


六、使用案例

用Hieff NGS? DNA Library Quantification Kit for Illumina?定量嗜盐杆菌基因组DNA文库,文库GC含量为70%,长度450 bp。将文库稀释10000倍上机检测,结果如下图所示。根据标曲及公式,文库终浓度=4.37 pM × 稀释倍数10000=43.7 nM。

image.png 

图2  文库qPCR精确定量

 

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